Внутренние незаразные болезни животных — одна из ведущих, профилирующих клинических дисциплин, формирующих ветеринарного врача, и первым предметом, вводящим студента в клинику, является пропедевтика (основы диагностики) внутренних болезней.
Цели этой дисциплины следующие:
- научить физическим методам исследования и рациональному подходу к больному животному;
- познакомить с основными симптомами и синдромами (сочетание симптомов, имеющих единое происхождение), встречающимися при заболеваниях внутренних органов;
- познакомить с основами диагностики наиболее часто встречающихся болезней.
Анализируя проявления заболевания, которые могут быть одинаковыми при различных видах патологии, студент учится находить признаки, которые позволяют с большей или меньшей степенью вероятности поставить правильный диагноз.
В связи с этим обучение основам диагностики (пропедевтика) внутренних болезней приобретает особое значение. Термин “пропедевтика” происходит от греч., что означает “подготовка”, “введение”.
Существующие подходы к обследованию больного имеют цель выработать у врача навык к определенной последовательности и особенно полноте в изучении больных животных. В основе их лежат принципы от общего к частному, от более поверхностного к более глубокому, от более простого к более сложному.
Последовательность предусматривает обследование больного, начиная с кожных покровов и слизистых оболочек, затем подкожной жировой клетчатки, лимфатических узлов, опорно-двигательного аппарата (суставы, кости, мышцы), и только потом исследуют системы дыхания, кровообращения, пищеварения, гепатобилиарную, мочевыделения, эндокринную, нервную, органы чувств. При этом каждый орган или система изучаются в определенной последовательности. При изучении каждой системы вначале врач использует более простые физические методы — расспрос, осмотр, далее более сложные — ощупывание (пальпация), выстукивание (перкуссия), выслушивание (аускультация).
Таким образом, итог многоэтапного диагностического поиска, а главное, попытки понять механизмы возникновения обнаруженных клинических признаков и их связь с факторами внутренней и окружающей больного животного среды, представить всю сложную систему изменений в ответ на действие этих факторов по существу соответствует тому представлению о болезни, которое дается ведущими клиницистами. Одно из наиболее полных определений болезни принадлежит Е.М. Тарееву: “Болезнь — это реакция организма на изменившиеся условия среды, нарушение конкретных форм приспособляемости организма. Именно взаимодействие среды и организма с его меняющейся реактивностью и должно всегда учитываться при суждении о причине, происхождении любой болезни”.
В процессе самостоятельных занятий в условиях клиники студенты должны провести исследование больного животного и на основании полученных данных оформить его историю болезни. В последующем выясняют патогенез болезни, форму течения, прогноз, назначают и проводят лечение. Во время работы студент использует настоящие методические указания, рекомендованную литературу и может воспользоваться консультацией преподавателя и врача-ординатора.
СХЕМА КЛИНИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
Клиническое исследование животных проводится в следующей последовательности.
Записывают вид, пол, породу, возраст, кличку, инвентарный номер, продуктивность, приметы животного, Ф.И.О. владельца и его адрес.
Anamnesis vitae — время нахождения животного в хозяйстве, (в доме владельца), характеристика помещения, условия содержания, кормления, водопоя, степень физической активности.
Anamnesis morbi — сведения о ранее перенесенных болезнях и их течении, санитарном и эпизоотическом состоянии хозяйства (административного округа, района), диагностических исследованиях животного, первоначальные симптомы отмечаемого заболевания, время и обстоятельства их проявления, кем, когда и как проведены первые и профилактические мероприятия, включая данные о наследственности.
В спокойном состоянии животного исследуют показатели температуры ( 0С ), частоты пульса (уд/мин.) и дыхания (в 1 мин.) и обозначают цифрами.
Габитус – состояние животного в момент его исследования.
Телосложение: крепкое, среднее, слабое.
Конституция: грубая, нежная, плотная, рыхлая.
Упитанность: хорошая, удовлетворительная, неудовлетворительная, истощение, ожирение.
Положение тела: добровольно-физиологическое активное, пассивное (стоячее или лежачее), вынужденное (стоячее или лежачее), а также необычные позы, принимаемые животными, непроизвольные вынужденные движения с их характеристикой.
Темперамент: живой, инертный, тип нервной деятельности.
Нрав: добрый, злой.
Кожа– волосяной покров: блестящий, матовый, волос удерживается прочно или слабо, прилегающий или взъерошен, густой или редкий, наличие участков облысения, сечения; равномерность, линька.
Эластичность: сохранена, понижена или потеряна.
Тургор кожи: сохранен, понижен, потерян.
Подкожная клетчатка: степень развития (удовлетворительная, слабая, чрезмерная), места наибольшего отложения жира, общее ожирение, исхудание, кахексия.
Влажность: умеренная, чрезмерно сухая, влажная, общая или местная потливость, асимметрия потоотделения.
Запах: специфический, неспецифический (характер и интенсивность).
Цвет: нормальный – указать оттенок, бледность, покраснение, синюшность, желтушность (общая или местная с описанием локализации и интенсивности), цианотичность, темно-коричневый, локализация патологической пигментации, гиперемия, петехии, экхимозы.
Болезненность: отсутствует, общая или местная боль и ее локализация.
Целостность: не нарушена или нарушена в виде потертостей, ушибов, струпов, ссадин, ран, трещин, язв, пролежней, рубцов, расчесов, струпов, бородавок с указанием места локализации и величины; пятна, эритема, кровоизлияния наличие пузырьков, волдырей, узелков, розеол, чешуек, папул, пустул их форма, цвет, распространение, величина.
Температура: общая или местная, без повышения, повышена, понижена.
Воспалительные процессы кожи и подкожной клетчатки: гиперемия, припухание (ограниченное или разлитое), боль, локализация.
Отеки: (головы, конечностей, живота) — отсутствуют, наличие и их локализация (застойные, воспалительные, кахектические, почечные), подкожная эмфизема, слоновость кожи; общие отеки, их постоянство, время появления, исчезновения.
Наличие паразитов: блохи, вши, власоеды, пухопероеды (для птицы).
Эпидермис кожи: сухой, влажный, шелушится, зоны шелушения и место их локализации.
Лимфатические узлы – подчелюстные, предлопаточные, коленной складки, надвымянные, паховые.
Величина: не увеличены, увеличены, уменьшены.
Подвижность: подвижны или неподвижны.
Консистенция: упругие, плотные, мягкие.
Болезненность: безболезненные, болезненные.
Местная температура: не повышена, повышена, понижена.
Слизистые оболочки – конъюктива, слизистые носа, ротовой полости, влагалища.
Цвет: бледно-розовый, розовый, цианотичный, фарфоровый, желтушность, покраснение, синюшность и их оттенки, пятна, пигментация естественная, патологическая или отсутствует.
Влажность: умеренно влажные, сухие, при наличии истечений – их характер.
Целостность: сохранена или нарушена, раны, ссадины, афты, наложения, узелки, рубцы, новообразования.
Отечность: не отечная, отечная, место локализации.
Местная температура: не повышена, повышена, понижена.
- ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЬНЫХ СИСТЕМ
Сердечно – сосудистая система
Осмотр и пальпация области сердца: болезненность сердечной области или отсутствие ее, величина площади сердечного толчка, смещаемость и смещение сердечного толчка; сердечный толчок – просматривается или не просматривается, по силе – умеренный, стучащий, усиленный, ослабленный, по характеру – диффузный (разлитой) или ограниченный (локализованный).
Перкуссия области сердца : границы абсолютной или относительной сердечной тупости (притупления) – верхняя и задняя в цифрах с указанием межреберья или ребра, увеличение или уменьшение относительной сердечной тупости, болезненность или отсутствие ее.
Аускультация области сердца: характер сердечных тонов – усиленные, ослабленные, чистые, оба или один умеренные, удлиненные; их ясность; изменения в виде глухости, расщепления, раздвоения, ритма галопа; акценты.
Отсутствие или наличие шумов:
Эндокардиальных — функциональные, органические, систолические, диастолические (отношение шумов к фазам сердечной деятельности; характер шумов; дующий, свистящий, скребущий, пилящий, музыкальный; интенсивность шумов; места выслушивания шумов наибольшей интенсивности; изменение шумов при перемене положения тела, до и после физической нагрузки).
Экстракардиальных — перикардиальные, плевроперикардиальные, кардиопульмональные.
Пульс и артерии: ритмичный или аритмичный; характеристика аритмий.
по напряжению кровеносных сосудов – нормальный, твердый, жесткий, мягкий;
по наполнению – полный, средний, пустой, умеренный;
по величине пульсовой волны – нормальный, большой, средний, малый, нитевидный;
по форме спадения волны – нормальный, умеренно спадающий, медленный, скачущий, альтернирующий, ложноальтернирующий, дикротический; состояние артериальной стенки, болезненность артерий при пальпации.
Вены: по эластичности – эластичные или уплотненные, пульсация яремных вен, наличие или отсутствие колебаний и пульса – отрицательного (физиологического), положительного (систолического); ундуляция; уплотнение, узловатость, болезненность вен.
Коллатеральное и варикозное расширение вен (грудной клетки, брюшной стенки, конечностей).
Исследование верхнего отдела дыхательных путей
Носовая полость: состояние отверстий носа, их контур, сужение или расширение, движение крыльев носа; вдох, выдох свободный, затруднен; истечения и их консистенция – серозные, слизистые, гнойные, смешанные, цвет – бесцветный, прозрачный, белый, красноватый, шафранно-желтый и др., запах – без запаха, гнилостный, с примесями воздуха, крови, количество – обильное, умеренное, скудное, незначительное, постоянное или периодическое; кровотечение из носа – отсутствует, одностороннее, двустороннее, обильное, скудное, длительное; кровь пенистая, алая, голубоватая, свернувшаяся, не свернувшаяся.
Придаточные полости черепа — гайморовы, лобные,воздухоносные мешки у лошади:конфигурация, болезненность, плотность костей, температура кожи местная, характер перкуторного звука, величина и напряженность мешка.
Гортань и трахея: наличие травм, припухлостей, инфильтрации, деформации, чувствительность, болезненность, безболезненность, местная температура, шумы, изменение голоса. Кашель – отсутствует, имеется, его характеристика: чистый, редкий, приступообразный, болезненный, сухой, влажный и момент его появления – при движении, в покое, на свежем воздухе, в помещении, в период приема корма; продолжительность кашлевого толчка.
Одышка: отсутствует или имеется, при наличии ее определить тип – инспираторная, экспираторная, смешанная, постоянная или периодическая в покое, после нагрузки, при движении.
Тип дыхания: грудобрюшное, грудное (костальное), брюшное (абдоминальное).
Ритм дыхания: ритмичное, саккадированное (прерывистое), дыхание Чейна-Стокса, Биота, диссоциированное дыхание Грокка, большое дыхание Куссмауля.
Глубина дыхания: умеренная, глубокая, поверхностная.
Симметричность: симметричное или асимметричное.
Исследование грудной клетки
Форма грудной клетки: (нормально-физиологическая, широкая, узкая, плоская, эмфизематозная – бочковидная; цилиндрическая); целостность, чувствительность, болезненность, сила и симметричность дыхательных движений – при глубоком и спокойном дыхании; положение лопаток – нормальное прилегание, отставление их в стороны в покое и при движении.
Деформация грудной клетки – лордоз, кифоз, сколиоз, кифолордоз;
Пальпация грудной клетки – состояние ребер, межреберных мышц, рахитические четки, болезненность.
Перкуссия грудной клетки: определяют границы слева и справа по двум линиям у крупного рогатого скота, по трем у лошадей, собак, свиней; отмечают изменение границ легких; характер перкуторного звука — ясный легочной – атимпанический, тимпанический, коробочный, металлический, звук треснувшего горшка; ясный, тупой, притупленный, высокий, низкий; продолжительный, короткий с указанием места локализации и границ; отклонения в звуках с указанием их размера и границ.
Аускультация грудной клетки: тип дыхания – везикулярное, нежное везикулярное, усиленное везикулярное, бронхиальное; наличие и характер шумов – бронхопульмональные (патологическое бронхиальное, амфорическое, экстрапульмональные (шумы плеска, трения, легочной фистулы) с указанием месторасположения каждого шума.
Хрипы – локализация; количество; характер и сила звучности: высокого, низкого тона, шипящие, музыкальные, свистящие; влажные мелко-, средне-, крупнопузырчатые; субкрепитирующие, крепитирующие.
№ п/п | Возраст | Наименование мероприятий | Примечание |
1. | В день завоза | Клинический осмотр, термометрия, санитарно-гигиеническая обработка кожного покрова 5 %-ным раствором СК-9. |
2. | На 2-3 день после завоза | Отбор проб фекалий от завезенной группы свиней для исследования на гельминтозы (аскаридоз, трихоцефалез, эзофагостомоз и др.), протозоозы (криптоспоридиоз, балантидиоз, кокцидиоз и др.), обследование свиней на саркоптоз и взятие проб крови от 100 % животных для исследования на лептоспироз, бруцеллез, сальмонеллез, листериоз (исследование на лептоспироз проводить не ранее 60 дней после вакцинации). | |
3. | 5-й день | Вакцинация против рожи и болезни Ауески. | |
4. | 7-й день | Дегельминтизация зараженных животных. | При необходимости проводится согласно приложения № 3. |
5. | 8-9-й день | Туберкулинизация (но не ранее 30 дней после туберкулинизации, проведенной в хозяйстве-поставщике). | |
6. | 13-15 день | Вакцинация против лептоспироза. | |
7. | 17-18 день | Отбор проб для проведения контрольных гельминтокопрологических исследований. | |
8. | 19 день | Повторная дегельминтизация свиней. | |
9. | 28-29 день | Вакцинация против чумы. | |
10. | При обнаружении в группе карантинируемого поголовья животных, больных инфекционными болезнями, ветеринарно-санитарные мероприятия проводят в порядке и объеме, предусмотренные действующими инструкциями по профилактике и борьбе с этими заболеваниями. | ||
IV. Цех осеменения и первой стадии супоросности. | |||
1. | Ежемесячно перед осеменением | Биохимический контроль за состоянием обмена веществ и резистентности организма: Хряков; Свиноматок. | Нормы биохимического и гематологического статуса организма свиней приведены в приложении № 1. |
2. | Перед осеменением | Вакцинация ремонтного молодняка против парвовирусной инфекции. | При установлении высоких титров антител у основных свиноматок. |
3. | В день применения СЖК | Введение ремонтным свинкам железосодержащий препарат ДИФ-3 внутримышечно в дозе 7 мл. | |
4. | После получения спермы | Санация спермы хряков. | |
5. | В течение периода супоросности | Обеспечение микроклимата в соответствии с принятыми нормами технологических предприятий. | См. приложение “ 2. |
6. | В течение периода супоросности | Дозированное ультрафиолетовое облучение свиноматок из расчета 150 мэр/час. | |
7. | Ежеквартально | Отбор проб спермы у хряков для контроля за бактериальной обсемененностью и наличием синегнойной палочки. | |
8. | На 3-4 день после осеменения | Витаминизация условно супоросных свиноматок. | |
9. | Два раза в год | Копрологическое обследование: хряков – индивидуальное; свиноматок до 5 %. | |
10. | Через 30-40 дней после осеменения | Дегельминтизация свиноматок. | При необходимости. |
11. | По мере поступления на убой | Обследование свиноматок на оллуланоз (10 % из каждой партии). | Исследуют соскобы со слизистой оболочки желудка или рвотные массы (см. приложение № 3). |
12. | 1-2- раза в год | Выборочное исследование на туберкулез, а бруцеллез и лептоспироз – при показаниях. | |
13. | На 1-ом месяце супоросности | Вакцинация против: Лептоспироза свиноматок | Согласно наставления по применению вакцины. |
Два раза в год | Лептоспироза хряков | Согласно наставления по применению вакцины. | |
Один раз в год | Пастереллеза | В неблагополучных хозяйствах. | |
14. | Перед переводом в цех второй стадии супоросности | Обработка свиноматок против саркоптоза. | При необходимости (см. приложение № 4). |
V. Цех содержания свиноматок второй стадии супоросности. | |||
1. | Вакцинация свиноматок по мере формирования технологических групп против: | ||
50-55 дни супоросности | Рожи и болезни Ауески. | Согласно наставления по применению вакцины. | |
65 и 75 дни супоросности | Колибактериоза | Исходя из эпизоотической ситуации. | |
2. | 80 и 95 дни супоросности | Обработка свиноматок тривитамином. | При необходимости. |
3. | 90 и 100 дни супоросности | Вакцинация против вирусного трансмиссивного гастроэнтерита и ротавирусной инфекции. | Исходя из эпизоотической ситуации. |
4. | За 2-3 дня до опороса | Клинический осмотр, мойка, дезинфекция кожного покрова | Моют под душем из шлангов водой комнатной температуры, обрабатывают 0,5 %-ным раствором едкого натра или 0,5 %-ным раствором хлорамина или 3 %-ным раствором креолина, а затем – 14 %-ным раствором хлорофоса или СК-9. |
VI. Цех опороса и содержания подсосных маток. | |||
1. | За 2-3 дня до опороса | Перевод технологических групп свиноматок в изолированные сектора и размещение их в индивидуальные станки с одновременным заполнением секций. | |
2. | При продолжительности опоросов свыше 3-х дней | Синхронизация опоросов. | Внутримышечное введение экстрофана в дозе 0,7 мл или 1 мл энзапроста. |
3. | При рождении 2 и 3-го поросенка с интервалом 25 и более минут | Стимуляция сократительной функции матки во время родов, повышение ее тонуса профилактика нарушений рефлекса молокоотдачи. | Вводят окситоцин в дозе 15 ЕД/100 кг дважды с 1,5-часовым интервалом. |
4. | После рождения | Санитарно-профилактическая обработка новорожденных поросят (очищение от слизи полости рта и носа, обработка пуповины настойкой йода). | |
5. | В первые 3-5 дней после | Дезинфекция воздуха в секторах в присутствии животных. | Йодинол из расчета 2 мл на 1 м 3 помещения, формалин, лесной. |
начала опоросов | бальзам А и др. препараты | ||
6. | Регулярно | Обогрев поросят инфракрасными и ультрафиолетовыми лучами. | В течение первых 3-х дней жизни поросят обогрев лампами ИК-излучения проводят постоянно; УФ-облучение – вначале на 20 мин, на 3-й день – 60 мин. Затем ИК-излучение в течение 1-й декады – 45 мин обогрев и 15 мин пауза, Начиная со 2-ой декады – 60 мин обогрев и 30 мин пауза. Ультрафиолетовые источники включают на 40 мин 3 раза в день. Высота подвеса источников 70-80 см. |
7. | Системати-чески | Контроль за микроклиматом обеспечивают в изолированной секции в соответствии с ОНТП – 2-85. | Температура воздуха – 22-24 0 С, относительная влажность – 60-70 %, движение воздуха – 0,15 м/сек, содержание в нем аммиака не выше 0,015 мг/л; воздухообмен в холодный период года – 30, переходной – 45, летний – 60 м 3 /сек на 1ц живой массы. В логове поросят температура воздуха и поверхности пола соответственно в первые 10 дней |
жизни – 30-32 0 С и 26-30 0 С; в возрасте 25 дней – 24 0 С 24-26 0 С, в месячном возрасте – 23 0 С и 22-24 0 С. | |||
8. | За 10-14 дней до случки | Вакцинация свиноматок против классической чумы в однократной дозе. | |
9. | В первые 12-18 часов после рождения | Технологические и профилактические обработки у поросят: — введение смеси, состоящей из 400 мл ферроглюкина, 10 г аскорбиновой кислота, 1,0 витамина и 200 мл дистиллированой воды по 5 мл. | |
У однодневных поросят | — обрезка хвостов, удаление клыков. | ||
Однодневным поросятам | — скармливание АБК, ПАБК – 7-10 мл на голову, пропиовит – 0,01-0,03 г на кг живой массы или сухой бифидумбактерин – по 0,5-1,0; сухой ацидофилин – по 1,5-3 мл 2 раза в день в течение 3-5 дней и другие пробиотики. | ||
2-3-дневным поросятам | — инъекция ферроглюкина или другого железосодержащего препарата с витамином В12 — 1 %-ный раствор соляной кислоты, — 1 %-ный раствор пепсина в смеси с 0,5 %-ным раствором соляной кислоты, — натуральный или искусственный желудочный сок. | ||
1-2- день жизни | — внутримышечное введение аллогенной сыворотки в дозе 4 мл или гамма-глобулина, полученного из крови свиней данного хозяйства, в дозе 2 мл. | ||
8-10 день | — повторное введение железосодержащих препаратов. | При необходимости отстающим в развитии поросятам. | |
12-15 день | — кастрация хряков | ||
1-15 день | — обследование поросят на криптоспоридиоз и проведение лечения. | При необходимости. | |
15-20 день | — контрольное копрологическое обследование до 5 % поросят на стронгилоидоз и кокцидиоз. | Периодически. | |
10. | 8-10 день | Вакцинация поросят против: — гемофилезного полисерозита и гемофилезной плевропневмонии | При показаниях, двукратно с интервалом 10-14 дней. |
30-45 день | — классической чумы. | В однократной дозе. | |
VII. Период выращивания поросят-отъемышей. | |||
1. | Первые дни после перевода на доращивание | Организация нормированного кормления поросят в соответствии с разработанной технологией. | |
2. | Начиная с первого дня после заполнения секции | Аэрозольная обработка сывороткой крови реконвалесцентов или аллогенной сывороткой. | По 2 мл/м 3 два-три раза через день. |
3. | 4-6-й день по окончании комплектова-ния сектора | Аэрозольная обработка йодинолом (2 мл/м 3 ) или йодтриэтиленглюколем (0,3-0,5 мг/м 3 ), лесным бальзамом А один раз в день в течение 5 дней. | |
4. | 2-8-й дни после отъема | Дача вместе с кормом смеси, состоящей (из расчета на 200 поросят): Фуразолидон – 200,0 | |
Сульфадимезин – 200,0 Поливитамин – 200,0 Витамин “У” – 12,0 | |||
5. | В возрасте 2-2,5 месяца | Выборочное обследование на зараженность поросят аскаридами, трихоцефалами, эзофагостомами, стронгилоидами и простейшими. | |
6. | В возрасте 2- | Дегельминтизация с учетом исследований. | При необходимости (см. |
2,5 месяца | приложение № 3). | ||
7. | Профилактика гастроэнтеритов у поросят через систему автопоения одним из препаратов: раствор Люголя с водой, обратом; | 1 г йода, 1,5 г йодистого калия, 1,5 л жидкости 2 раза в день 3 дня подряд. | |
— калия перманганат с водой (разведение 1:5000); | До 0,1 г 7 дней подряд. | ||
— метиленовый синий (разведение 1:1000-1:2000); | 1-1,5 г 3 дня подряд. | ||
— генцианвиолет с водой (разведение 1:2000); | 0,2-0,4 г 3 дня подряд. | ||
— ихтиол с водой (разведение 1:1000-1:2000); | До 1,0-1,5 г 3 дня подряд. | ||
— фурациллин с водой (разведение 1:5000-1:10000). | До 0,05-0,1 г 5 дней подряд. | ||
8. | 50-55 дни | Вакцинация поросят парэнтерально против: — рожи; | |
75-80 дни | — рожи; | ||
85-100 дни | — чумы. | ||
9. | Постоянно | Выбраковка слабо развивающихся поросят. | Для убоя и реализации. |
10. | Постоянно | Контроль за состоянием микроклимата согласно ОНТП – 2-85. | В зимний и переходный периоды температура воздуха – 18 0 С, относительная влажность – 70 %, скорость движения воздуха – 0,2-0,6 м/сек, содержание аммиака – |
0,015 мг/л, воздухообмен в зимний период – 30, в переходной – 40 и в летний – 60 м 3 /час на 1 ц живой массы. | |||
VIII. Цех содержания свиней на откорме. | |||
1. | После освобождения | Механическая очистка, мойка и дезинфекция кормушек, кормовых проходов и станков в секторе. | |
станков. | |||
2. | Контрольное гельминтокопрологическое обследование 5 % подсвинков на | Один раз в месяц. | |
зараженность аскаридами, прихоцефалами, эзофагостомами, стронгилоидами и простейшими. | |||
3. | Выделение в санитарные станки и лечение больных животных. | Постоянно. |
Справочное Приложение № 1
Дата публикования: 2014-11-19 ; Прочитано: 1103 | Нарушение авторского права страницы
studopedia.org — Студопедия.Орг — 2014-2020 год. Студопедия не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования (0.002 с) .
Комплексный подход в диагностике болезней свиней
Александр Александрович Духовский, кандидат ветеринарных наук, ответственный секретарь экспертно-консультационного совета по ветеринарии при НСС.
На промышленных свиноводческих комплексах в той или иной степени проявляются заболевания в виде синдромов, принося огромный ущерб предприятию. В качестве примеров можно привести респираторный синдром на доращивании или откорме, диарейный синдром на откорме, доращивании или подсосе, аборты у свиноматок и др. Выяснение истинной причины проявления того или иного синдрома и ее устранение крайне важная задача, которая в первую очередь ложится на плечи ветеринарного врача.Как правило, детально разобраться в проблеме не удается по разным причинам: недостаток времени у специалистов для глубокого анализа, так как, обычно, факторов выявляется несколько, и все требуют детальной проработки;недостаток консультантов с богатым практическим опытом, к которым можно обратиться за советом;несовершенство лабораторной диагностики, включая недоступность некоторых методов и не на постоянной основе использование доступных и др.В итоге, в большинстве случаев интуитивно или с минимальной доказательной базой, выдается заключение.
По нашим наблюдениям, чаще всегочереда технологических нарушений выращивания свиней приводит к проявлению патогенных свойств какого-либо инфекционного агента или их сочетания, как вирусного так и бактериального происхождения, формируя синдром. Для того чтобы разобраться в природе того или иного синдрома, нужно по максимуму собрать всю информацию и проанализировать. На первом этапе это могу быть статистические, клинические, патологоанатомические данные и др. Далеенеобходимо сделать предположение и подтвердить его или опровергнуть различными приемами. На этом этапе многие часто и останавливаются, переходя к разноплановым практическим действиям, что по сути своей правильно, так как необходимо оперативно реагировать на ситуацию, только при таком подходе до выяснения истиной причины так дело и не доходит. Синдром может уйти или сгладить свое течение, но потом снова,как правило, проявляется.
В данной статье яхотел бы поделиться опытом выяснения причины респираторного симптомокомплекса у поросят на участке доращивания крупного свиноводческого комплекса.
В августе-октябре 2014 года при клиническом обследовании поросят на доращивании выявили животных с высокой температурой 40,3- 41,6°С, у большинства животных в возрасте 50-70 дней отмечали влажный кашель, серозные истечения из носа. Рис. 1,2. При патологоанатомическом вскрытии у поросят данной группы были отмечены пневмонии разного характера в 100% случаев. Рис. 3,4,5,6. При анализе статистических данных выявили увеличение падежа в 2 раза в данный период времени по сравнению с показателями прошлого года. Падеж вырос преимущественно за счет увеличения данного показателя в группе поросят участка доращивания. Рис.7.
Рис. 7. Динамика падежа свиней всех групп за период 2013-2014 гг.
Изучение протоколов серологический исследований, имеющихся в хозяйстве на момент обследования, показало циркуляцтю в стаде возбудителей следующих заболеваний: АПП, Энзоотическая пневмония, РРСС, Гемофилезный полисерозит, Грипп и др.
Была поставлена задача определить какой из возбудителей стал причиной проявления столь яркой клинической и патологоанатомической картины и разработан алгоритм действий.
Для этого был произведен диагностический убой 4-х поросят в возрасте 60 дней с характерными клиническими признаками острого респираторного заболевания (температура 41 градус и выше, кашель и др.) и отбор материала (кровь, кусочек легкого, бронхиальная слизь, средостенные лимфоузлы) для лабораторного исследования методом ПЦР, ИФА и бактериологическим на все предполагаемые возбудители.
Не дожидаясь результатов лабораторных исследований, была усилена схема антибактериальной терапии за счет ввода препаратов группы амоксициллинов, которая, в период пика заболевания не дала быстрого ощутимого эффекта.
Результат исследования в ПЦР показал, что в легких, бронхиальной слизи и пробах крови выделен европейский тип вируса РРСС. В легких и бронхиальной слизи от поросят обнаружены цирковирус 2-го типа, вирус гриппа свиней и Haemophilusparasuis. Табл.1.
Табл.1 Результаты исследования патматериала от вынужденно убитых поросят методом ПЦР на наличие инфекционных агентов.
Секвенирование вируса РРСС показало, что выявленный в легких от свиней вирус РРСС генетически существенно отличается от всех изолятов вирусов РРСС, имеющихся в базах данных ВНИИЗЖ. Рис. 8. Было сделано предположение, что данный изолят вируса РРСС был занесен в стадо много лет назад и, с тех пор, постоянно циркулировал в организме животных данной популяции. В качестве специфической профилактики вируса РРСС применялись толmко инактивированные вакцины отечественного производства.
Рис.8 Положение изолята «Духовский/ 30-10-2014» на филогенетическом древе вируса РРСС европейского генотипа.
При бактериологическом исследовании из легких и бронхиальной слизи поросят был выделенвозбудитель стрептококкоза свиней Streptococcussuis. Табл.2. Изолят, выделенный из легких проявил высокую чувствительность к группе ß-лактамных антибиотиков, а именно к природным и полусинтетическим пенициллинам, цефалоспоринам III-IVпоколения и др.Табл.3.
Табл. 2. Результаты исследования патматериала от вынужденно убитых свиней с респираторным синдромом бактериологическим методом на наличие инфекционных агентов.
Табл.3. Результаты определения чувствительности изолятаS. suis, выделенного из легких,к антибактериальным препаратам.
При исследовании методом ИФА сыворотки крови, полученной от 5-и вынужденно убитых поросят в возрасте 60 дней, обнаружены антитела к вирусу РРСС, цирковирусу 2-го типа и Actinobacilluspleuropneumoniae. Повторно, с интервалом 1 месяц, была отобрана кровь у поросят из этой же группы для исследования на те же заболевания. В результате сравнительного анализа было выявлено, что среднее значение антител к вирусу РРСС практически не изменилось и составило 79,4%, против 81,5% 1 мес. назад, к АПП произошло снижение антител с 31,9% до 26,1% соответственно. Однако среднее значение антител к цирковирусу 2-го типа выросло с 22,8% до 32,8% (увеличение на 44%), а к вирусу гриппа типа А увеличение произошло со средне отрицательного значения 9,22% до средне положительного 40,67, т.е. в 4,4 раза. Необходимо отметить, что при дополнительном исследовании положительно реагирующих сывороток на вирус гриппа тип А было выявлено, что подтип H1N1 в большинстве случаев показывал положительную реакцию и в более высоких значениях, чем подтипH3N2, превышая последний в 3,5 раза. Табл.4.
Табл.4. Результаты исследования сывороток свиней методом ИФА.
Таким образом, можно сделать вывод, что проявление ярко выраженного респираторного синдрома было обусловлено заражением поросят вирусом гриппа и обострением течения цирковирусной инфекции. Вместе с этим важную роль в продолжительном течении респираторного синдрома и падеже поросят на участке доращивания сыграл вирус РРСС, так как по результатам ПЦР была выявлена виремия и одновременно с этим высокие титры антител. Очевидно, что поросята были заражены еще раньше и, к моменту первого взятия крови на ИФА, уже выработали антитела в высоких титрах.
Остается не выясненным факт, почему ПЦР не выявила стрептококк, который был культивирован бактериологическим методом, а бактериологическим методом не обнаружен Haemophilusparasuis. На этот счет есть несколько предположений. Но в терапевтической практике это особого значения не имеет, так как часто оба эти возбудителя показывают высокую чувствительность к одним и тем же антибактериальным препаратам.
Считаю, что в промышленном свиноводстве при любом синдроме, предполагающем инфекционную природу, только комплексный всесторонний анализ поможетразобраться в ситуации и выработать правильную стратегию для последующих действий.